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脂質體轉染的原理和步驟詳解
  • 發布日期:2021-12-03      瀏覽次數:768
    • 1、細胞傳代

      1)棄掉培養皿中的培養基,用1ml的PBS溶液洗滌兩次。

      2)用移液槍加入1ml胰酶,消化1min(37℃,5% CO2)。用手輕拍培養瓶壁,觀察到細胞*從壁上脫落下來為止。

      3)加入1ml的含血清培養基終止反應。

      4)用移液槍多次吹吸,使細胞*分散開。

      5)將培養液裝入離心管中,1000rpm離心5min。

      6)用培養液重懸細胞,細胞計數后選擇0.8 x 106個細胞加入一個35mm培養皿。

      7)將合適體積*培養液加入離心管中,混勻細胞后輕輕加入培養皿中,使其均勻分布。

      8)將培養皿轉入CO2培養箱中培養,第二天轉染。

      2、細胞轉染

      1)轉染試劑的準備

      A、將400ul去核酸酶水加入管中,震蕩10s,溶解脂狀物。

      B、震蕩后將試劑放在-20℃保存,使用前還需震蕩。

      2)選擇合適的混合比例(1:1-1:2/脂質體體積ul:DNA質量ug)來轉染細胞。在一個轉染管中加入合適體積的無血清培養基。加入合適質量的MyoD或者EGFP的DNA,震蕩后在加入合適體積的轉染試劑,再次震蕩。

      3)將混合液在室溫放置10-15min。

      4)吸去培養板中的培養基,用PBS或者無血清培養基清洗一次。

      5)加入混合液,將細胞放回培養箱中培養一個小時。

      6)到時間后,根據細胞種類決定是否移除混合液,之后加入*培養繼續培養24-48h。

      3、第二次細胞傳代

      1)在轉染后24h,觀察實驗結果并記錄綠色熒光蛋白表達情況。

      2)再次進行細胞傳代,按照免疫染色合適的密度0.8 x 105個細胞/35mm培養皿將細胞重新分入培養皿中。

      3)在正常條件下培養24h后,按照染色要求條件固定。